前面几期，小翌介绍过“翌圣转座酶系列产品助力NGS文库构建”（戳链接了解详情）。本期，小翌重点聊聊pG-Tn5。

 什么是pG-Tn5 pG-Tn5(pG-Tn5 Transposase)是将Protein G(pG)与经过改造的Tn5转座酶进行融合，形成的同时具备转座酶与Protein G活性的新型融合酶。Protein G能特异性与抗体结合，从而使得pG-Tn5具备更高的靶向性。Tn5 是一种细菌转座子, 经改造的Tn5能够高效地切割DNA, 同时连接上特定的接头序列, 因而被广泛应用于高通量二代测序文库构建中（戳链接了解详情）。pG-Tn5融合Protein G和Tn5活性，能精准靶向切割目的蛋白附近的DNA序列，专门适用于蛋白质-基因组互作研究的CUT&Tag技术领域。

 CUT&Tag技术原理 

CUT&Tag（Cleavage Under Targets and Tagmentation）是一种新的DNA-蛋白质互作研究方法，该技术涉及的核心酶原料是pG-Tn5或pA-Tn5(pA-Tn5 Transposase)。Protein A(pA)与pG的作用类似，特异性结合抗体，从而使得pA-Tn5具备更高的靶向性。Protein A 和 Protein G与不同种类和免疫原性的抗体的亲和力具有较大区别^[1]，因此pA和pG可以靶向结合不同抗体。

与传统的ChIP-Seq相比，CUT&Tag不需要使用甲醛交联以及免疫共沉淀，而是通过针对靶蛋白（如转录因子、染色质重塑蛋白）的抗体和Protein G/A的介导，使得与Protein G/A融合的Tn5酶在切割DNA片段的同时在序列两端加上测序接头，经PCR扩增后即可形成用于高通量测序的文库（图1）。CUT &Tag技术具有细胞投入量低、信噪比高、实验周期短（1天实现文库构建）、可重复性好等显著优势，可应用于蛋白质与DNA互作研究、检测组蛋白修饰在基因组上分布位点、鉴定转录因子在全基因组上的结合位点、超级增强子鉴定等。

 翌圣pG-Tn5 

由于CUT&Tag主要是针对极低细胞起始量进行实验，这就要求核心酶原料具有高切割活性、对微量DNA有高灵敏度和高亲和力以及超低污染性。翌圣ZymeEditor™酶改造平台将改造的具有超高活性的Tn5转座酶突变体与Protein G融合，从而获得能精准、高效切割目的蛋白附近DNA序列的pG-Tn5(Cat#14530ES)。翌圣pG-Tn5具有核酸酶残留低、片段化能力强（切割活性）、建库产量高等优势，可用于CUT&Tag实验。

 部分数据展示 01

无核酸外切酶残留

将1 U/5 U的pG-Tn5 Transposase分别与底物DNA在37°C下孵育4 h，琼脂糖凝胶电泳比较DNA谱带变化，结果显示翌圣pG-Tn5 Transposase在5 U投入量下未检出核酸外切酶残留。

02

相同酶投入量下，片段化能力优于其它品牌

  分别使用翌圣及品牌A相同酶量的pG-Tn5 Transposase对200 ng gDNA进行片段化，Agilent 2100检测片段大小分布，结果显示：相同酶量下，翌圣pG-Tn5 Transposase片段化效果更好，酶活性更高。

03应用于CUT&Tag建库产量更高  

分别使用翌圣及品牌A相同酶量的pG-Tn5 Transposase对1000个细胞投入量样本建库，并对文库测序后的数据进行分析，结果显示翌圣pG-Tn5 Transposase文库产量高于品牌A（图4A），Mapping率相当（图4B）; 染色质上的信号分布情况与品牌A一致（图5）。

参考文献

[1] Dancette OP, Taboureau JL, Tournier E, et al. Purification of immunoglobulins G by protein A/G affinity membrane chromatography. J Chromatogr B Biomed Sci Appl. 1999 Feb 19;723(1-2):61-8. doi: 10.1016/s0378-4347(98)00470-8. 

[2]  Kaya-Okur HS, Wu SJ, Codomo CA, et al. CUT&Tag for efficient epigenomic profiling of small samples and single cells. Nat Commun. 2019 Apr 29;10(1):1930. doi: 10.1038/s41467-019-09982-5.